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Messaggio inserito da lichene

Per chi interessato, invio le composizioni dei reagenti utilizzati in microscopia....... magari un poco alla volta!!!!

ACIDO ACETICO 4 - 50%
Composizione:
Acido acetico glaciale 50 ml
Acqua 50 ml

Modalità di preparazione:
Versare l'acido nell'acqua e mescolare. Conservare ben tappato
per evitare l'evaporazione dell'acido.

Usi:
Come rigonfiante quando non si possono utilizzare reidratanti basici.

Saluti e Buon 2005!!!
Fabrizio




lichene

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Messaggio inserito da lichene

Aldeide glutarica
Composizione:
Acqua - 37,8 ml
Aldeide glutarica al 2,5% - 7,2 ml
Soluzione tampone fosfato pH 7 - composizione:
Potassio idrogeno fosfato K2HPO4 - 4 g
Potassio di idrogeno fosfato KH2PO4 - 5 g
Acqua - 91 ml

Modalità di preparazione:
Preparare a parte la soluzione tampone a pH 7. Quindi sciogliere l'aldeide in
acqua e aggiungere infine la soluzione tampone.

Usi:
Usata soprattutto per la preparazione dei campioni da osservare al microscopio
elettronico.

Note:
La soluzione va conservata in frigorifero.

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AMMONIACA, IDRATO O IDROSSIDO DI AMMONIO
Composizione:
Per le reazioni macrochimiche soluzioni acquose al 10% o 25%.
Come rigonfiante: soluzioni acquose al 2% o 6%

Modalità di preparazione:
La soluzione concentrata del commercio (32%) viene diluita con acqua distillata:
al 25% mescolare 25 parti di sol. conc. + 7 parti in peso di acqua
al 6% mescolare 6 parti di sol. conc. + 26 parti in peso di acqua
al 2% mescolare 2 parti di sol. conc. + 30 parti in peso di acqua

Come reattivo macrochimico per alcune reazioni basta il vapore del flaconcino
(es.: Dermocybe, Cortinarius elegantior alla base del gambo, ecc.).
Come reattivo per microscopia è utilizzato prevalentemente come rigonfiante di
materiale d'erbario (exsiccata) in concentrazioni 2-5% generalmente prima delle reazioni
con Melzer. E' preferibile che la concentrazione non vada oltre il 25% per non produrre dei
rigonfiamenti anormali di ife e spore (che possono anche rompersi).
Viene utilizzato anche per l'osservazione di alcune strutture microscopiche:
- Per osservare i crisocistidi (per es.: Hypholoma, Pholiota, Strophariaceae): i
corpuscoli interni rifrangenti generalmente diventano gialli (anche con KOH). Attenzione
che spesso sono gialli naturalmente.
- Per osservare le spinule, che si anneriscono con ammoniaca, le formazioni ad
uncino dell'imenio di alcune Hymenochaetaceae (Phellinus, Onnia, ecc.).

Ciao, ciao Fabrizio

Per la reidratazione è sconsigliato in quanto troppo violento è il rigonfiamento dei tessuti:molto migliore è la reidratazione con l'uso della potassa caustica al 3%-5%.
Gaspy



lichene

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Messaggio inserito da Daniele

Uno degli aspetti non secondari, da tenere presente nell'acquisto dei reagenti è la scadenza....

.....Anche il Melzer scade molto velocemente. Meglio preparare piccole quantità. io tengo gli ingredienti base separati (iodjo Jodurato , cloralio idrato....) e li miscelo ogni volta che mi servono, comunque in quantità bastevoli per 15 gg. e non di più....

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Messaggio inserito da franco

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Messaggio inserito da Daniele

Uno degli aspetti non secondari, da tenere presente nell'acquisto dei reagenti è la scadenza....

.....Anche il Melzer scade molto velocemente. Meglio preparare piccole quantità. io tengo gli ingredienti base separati (iodjo Jodurato , cloralio idrato....) e li miscelo ogni volta che mi servono, comunque in quantità bastevoli per 15 gg. e non di più....

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Il Melzer (ed il Lugol) lo faccio preparare in farmacia. Poi lo tengo in frigorifero dove dura illimitatanmente, tenendo in bottiglietta solo una porzione di pochi cc.
Per l' idrato di cloralio, quello me lo procuro dalla Titolchimica in cristalli. Attenzione che è molto igroscopico e quindi fà grumi.
La soluzione satura la preparo al momento sul vetrino una goccia d' acqua ed un puntina di idrato di cloralio.
Far molto attenzione, l' idrato di cloralio è molto velenoso e perciò, fattone uso, lavare bene il tutto e gettare nel fuoco la carta bibula usata per assorbire gli eccessi.
E' buona pratica sperimentare il Melzer su tutte le spore ed i tessuti analizzati: talvolta si scopre la destrinoidità (pseudo amiloidia) in luoghi sconosciuti!
Gaqspy

Caro Daniele, sono anch'io nuovo di questo forum, ma non sono nuovo a preparare reagenti e coloranti. Dove lavoro siamo in parecchi ad adoperare questi prodotti, in particolare il Melzer ed il Lugol; le ricette sono pubblicate sulla chiave di Moser (dovrebbe uscire in questi giorni la versione tedesca Moser-Horak, aggiornata e corretta)

Ogni anno preparo questo reagente e succede che ci vogliono 2 giorni per sciogliere completamente lo iodio metallico a temperatura ambiente su agitatore magnetico.

Lo ioduro, invece, si scioglie in pochi secondi...alle volte un paio di minuti, quando lo aggiungi, facendo diventare quasi nera, la soluzione altrimenti quasi trasparente (faccio questa operazione in bottiglie di vetro scure)

Questa soluzione, molto stabile, dura normalmente 4 o 5 anni se tenuta la buio, poi comincia a sbiadire ed il suo effetto cala.

Ove serve solo una amiloidia generica (per esempio sull'imenio di un Albatrellus, sulle spore di A.phalloides o cose simili), anche quasi completamente trasparente, la reazione rimane molto evidente (provare prima su un pezzo di carta che contenga cellulosa, deve diventare blunero e non marrone)
Se serve qualcosa di più fine, come le reazioni destrinoidi o le amiloidie leggere di qualche altro gruppo di funghi, è meglio avere una soluzione che funzioni come da manuale e quindi non più vecchia di un anno.

Ricordarsi sempre che lo iodio deve essere sciolto prima, a lungo e se cel'hai in scaglie, devi pure batterlo per ottenere una polvere, altrimenti ci puoi mettere anche una settimana a scioglierlo tutto.
Consiglio di preparare non meno di mezzo litro alla volta e mettersi in società per consumarlo, visto che ogni volta diventa la storia de sior Intento...

ciao Franco

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